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我們都知道，細胞如果要長期保存，需要凍存起來放液氮保存。那怎么樣凍存細胞才能保證細胞能正常復(fù)蘇，不至于凍存死亡呢？下面我們就來講講細胞凍存應(yīng)該注意的一些地方。
1. 保持凍存前細胞狀態(tài)良好
凍存前一定要保證細胞狀態(tài)良好，細胞處于對數(shù)生長期，否則不管后面怎么處理，凍存后的細胞狀態(tài)必然有影響。若細胞密度偏高，培養(yǎng)基已經(jīng)略微變黃，細胞狀態(tài)正常，需要換液培養(yǎng)2h以上再凍存細胞；若已*變黃，細胞死亡超過20%，需要傳代后再重新培養(yǎng)至狀態(tài)正常后再凍存細胞。
2. 消化、吹打細胞按盡量輕柔
如何正確消化、吹打細胞在前面已經(jīng)講過了，有興趣的話可以到以往文章里看看，這里就不再贅述了。凍存后細胞培養(yǎng)瓶和培養(yǎng)皿肯定還是會殘留一點細胞，這些殘留的細胞加新的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)，如果培養(yǎng)正常就可以看出凍存時消化、吹打操作是沒有問題的，如果直接死了或者狀態(tài)不好，那凍存的細胞自然也好不到哪里去，問題出在哪就很明顯了。
3. 凍存液配方要給合適的
凍存液配方這個其實不同實驗室都有自己的習(xí)慣，有FBS+10%DMSO的，也有*培養(yǎng)基+10%DMSO的，還有基礎(chǔ)培養(yǎng)基+血清+DMSO=7:2:1 6:3:1 5:4:1，可以說是五花八門，但總體來說，DMSO一般是不超過12%的，血清濃度越高凍存效果也越好，因此需要多凍幾次對比合適的配方。
4. 凍存液要提前配置
凍存液使用時要提前配好，不能直接在細胞懸液中加DMSO凍存細胞，否則DMSO溶解時濃度不均加上溶解放熱會損傷細胞活性?？梢袁F(xiàn)配先用，也可以多配一點，4度最多可以保存3個月，-20度可以保存一年。細胞用凍存液重懸后應(yīng)盡快放到4度或者程序性凍存盒開始凍存，避免長時間室溫狀態(tài)，因為室溫條件下DMSO對細胞是有害的。
5. 凍存細胞數(shù)量選擇
通常來說，凍存細胞都會有一部分細胞死亡，所以凍存剩下的活細胞數(shù)量才是決定細胞復(fù)蘇后能否正常養(yǎng)起來的關(guān)鍵。一般凍存不容易死的細胞數(shù)量每管在100-200萬就夠了，一些凍存很容易死的細胞，比如NK92、THP-1、SF9等細胞數(shù)量要稍微高點，300-400萬左右為宜。凍存液一般1ml左右每管，這個基本每個實驗室都差不多。
6. 凍存程序選擇
凍存的時候可以選擇用程序性凍存盒直接放到-80度凍存細胞，但要記得異丙醇要及時更換，一般用4-5次異丙醇含水量就超標了，不再適合凍存細胞使用。也可以將凍存管依次在4度10min，-20度2h，-80過夜后液氮保存。-80度不適合細胞長期保存，只能短期保存，最好不要超過一周，否則有部分細胞系活性可能會下降很厲害，長期保存的細胞最好放液氮罐保存。
7. 注意凍存檢查
凍存細胞后應(yīng)在同一批次內(nèi)隨機選一只細胞復(fù)蘇檢測凍存效果， 如果復(fù)蘇效果不佳的話需要找到問題所在摸索合適條件重新凍存細胞，如果復(fù)蘇良好的就可以放到液氮里長期保存了。這個也是前面推薦將凍存剩下的細胞繼續(xù)培養(yǎng)的原因，可以有效避免細胞凍存失敗導(dǎo)致絕種
